Biologiczne praktikum kryminalistyczne
Informacje ogólne
Kod przedmiotu: | 0400-BKR602LD |
Kod Erasmus / ISCED: | (brak danych) / (brak danych) |
Nazwa przedmiotu: | Biologiczne praktikum kryminalistyczne |
Jednostka: | Wydział Biologii i Ochrony Środowiska |
Grupy: | |
Punkty ECTS i inne: |
0 LUB
6.00
(w zależności od programu)
|
Język prowadzenia: | polski |
Forma studiów: | stacjonarne |
Wymagania wstępne: | Znajomość biochemii, biologii molekularnej, mikrobiologii ogólnej, antropologii, mikologii, genetyki, immunologii i biofizyki na poziomie studiów licencjackich. Znajomość podstawowych technik biochemiczno-biofizycznych oraz mikrobiologicznych. |
Skrócony opis: |
Zajęcia prowadzone są dla kierunku biologia kryminalistyczna (3 rok studiów I stopnia). Studenci zdobywają umiejętność przeprowadzania doświadczeń i interpretowania wyników. Zapoznanie z wybranymi technikami badawczymi, w tym: skaningowy mikroskop elektronowy (SEM), mikroskopia konfokalna 3D oraz fluorescencyjna, spektroskopia, fluorymetria, łańcuchowa reakcja polimerazy w czasie rzeczywistym (Real-Time PCR). Poszerzanie wiedzy i doskonalenie umiejętności praktycznych w zakresie metod biochemicznych, mikrobiologicznych, immunologicznych i genetycznych stosowanych w biologii kryminalistycznej; umiejętności samodzielnego wyszukiwania potrzebnych informacji oraz czytania ze zrozumieniem naukowych artykułów przeglądowych i prac eksperymentalnych; wykształcenie samodzielności w pracy laboratoryjnej; zapoznanie studentów z zasadami bezpieczeństwa z materiałem biologicznym. |
Efekty uczenia się: |
Wiedza / Student: - opisuje wybrane zaawansowane procedury stosowane w biologii w zakresie biochemii, mykologii, mikrobiologii, immunologii, biofizyki, biologii molekularnej, oraz antropologii; - definiuje podstawowe pojęcia i terminy z zakresu poznanych technik laboratoryjnych; - wyjaśnia przyczyny zaburzeń procesów hemostatycznych i powstawania chorób zakrzepowo-zatorowych i skaz krwotocznych; - opisuje mechanizmy prowadzące do powstawania czopu hemostatycznego;. - poznaje metody biochemicznej analizy wybranych płynów ustrojowych; - poznaje wybrane markery uszkodzenia tkanek w płynach ustrojowych; - wyjaśnia działanie mykotoksyn oraz substancji uzależniających i ich wpływ na organizm człowieka; - opisuje metody wykorzystywane do oceny zanieczyszczenia pomieszczeń i produktów przez grzyby; - charakteryzuje metody analizy materiału biologicznego oraz dowodowego z zakresu biologii środowiskowej; - student nawiązuje do najnowszych osiągnięć nauk biologicznych stosowanych w postępowaniu dowodowym; - definiuje podstawowe pojęcia z zakresu toksykologii tzn. pojęcie trucizny, krzywej dawka-efekt, LD50; - klasyfikuje specyficzne i niespecyficzne odtrutki stosowane w zatruciach; - charakteryzuje biomarkery wykorzystywane w toksykologii (aktywność AChE, stężenie met-Hb i HbCO); - charakteryzuje mechanizm działania wybranych metali ciężkich oraz promieniowania jonizującego; - charakteryzuje podstawowe narzędzia i techniki współczesnej inżynierii genetycznej; - charakteryzuje nowoczesne techniki histologiczne w kryminalistyce; - wyjaśnia działanie enzymów restrykcyjnych; Realizowane kierunkowe efekty kształcenia w zakresie wiedzy: 04K-1A_W01, 04K-1A_W02, 04K-1A_W03, 04K-1A_W04, 04K-1A_W06, 04K-1A_W08, 04K-1A_W11, 04K-1A_W13, 04K-1A_W14 Umiejętności / Student: - przygotowuje i wykonuje oznaczenia koagulologiczne pracując w grupie; - wykonuje pomiary czasów krzepnięcia tj. czas trombinowy - PT oraz czas częściowej tromboplastyny po aktywacji – APTT; - oznacza stężenia fibrynogenu w osoczu metodą Claussa z wykorzystaniem metodyki diagnostycznej; - oznacza kolorymetrycznie poziom wybranych markerów enzymatycznych: dehydrogenazy mleczanowej (LDH) oraz β-N-acetyloglukozaminidazy (β-NAG) w płynach ustrojowych: - oblicza aktywność enzymatyczną w określonych jednostkach; - wykonuje biochemiczne analizy wybranych płynów ustrojowych; - samodzielnie analizuje wyniki przeprowadzonych badań, sporządza wykresy i schematy do wykonywanych doświadczeń koagulologicznych, wyciąga wnioski z uzyskanych wyników; - potrafi samodzielnie wykonać preparat mikroskopowy i rozróżnić cechy morfologiczne grzybów; - potrafi samodzielnie zidentyfikować typ zęba, wskazać koronę, szyjkę i korzeń; - analizuje pod mikroskopem strukturę szkliwa; - samodzielnie wykonuje preparaty odontologiczne; - identyfikuje szczątki roślinne z użyciem skaningowego mikroskopu elektronowego (SEM) oraz rentgenowskiej spektroskopii energodyspersyjnej (SEM-EDS); - identyfikuje ślady biologiczne ujawnione na miejscu zdarzenia; - student wykorzystuje dostępne źródła informacji naukowej (w tym w j. obcym) w celu weryfikowania zebranego materiału biologicznego oraz podnoszenia własnych kwalifikacji; - dokonuje pomiarów aktywności acetylocholinoesterazy we krwi jako wskaźnika zatrucia insektycydami fosforoorganicznymi (biomarker specyficzny); - rozpoznaje różne patologiczne formy hemoglobiny, tj.: hemoglobinę tlenkowęglową, cyjanmethemoglobinę i methemoglobinę; - charakteryzuje metody dozymetrii promieniowania jonizującego; - stosuje wybrane narzędzia on-line pomocne w klonowaniu molekularnym (m.in. tworzenie map wektorów, zestawianie reakcji ligacji; - izoluje materiał genetyczny z różnych źródeł biologicznych; - wykonuje samodzielnie reakcję PCR; Realizowane kierunkowe efekty kształcenia w zakresie umiejętności: 04K-1A_U01, 04K-1A_U02, 04K-1A_U03, 4K-1A_U04, 04K-1A_U05, 04K-1A_U10, 04K_1A_U11 Kompetencje społeczne / Student: - współpracuje podczas realizacji projektów grupowych pełniąc różne role i szanując pracę innych osób - samodzielnie opracowuje i analizuje wyniki przeprowadzonych badań, sporządza wykresy i schematy do wykonywanych doświadczeń; - odpowiedzialnie traktuje powierzony sprzęt analityczny, pracę własną i innych; - wykorzystuje różne źródła informacji z poszanowaniem praw autorskich; - pracuje samodzielnie i w zespole przy wykonywaniu skomplikowanych procedur doświadczalnych, - krytycznie oceniając efekty pracy własnej i innych; - przestrzega przepisów BHP wykazując odpowiedzialność za bezpieczeństwo pracy własnej i zespołowej. - uzasadnia potrzebę aktualizacji i poszerzania wiedzy z zakresu zagadnień związanych z toksykologią; Realizowane kierunkowe efekty kształcenia w zakresie kompetencji społecznych: 04K-1A_K01, 04K-1A_K04, 04K-1A_K05, 04K-1A_K06, 04K-1A_K07 |
Zajęcia w cyklu "Semestr letni 2024/2025" (jeszcze nie rozpoczęty)
Okres: | 2025-03-03 - 2025-09-30 |
Przejdź do planu
PN WT ŚR CZ PT |
Typ zajęć: |
Ćwiczenia laboratoryjne, 52 godzin
|
|
Koordynatorzy: | Beata Marciniak | |
Prowadzący grup: | Katarzyna Hnatuszko-Konka, Iwona Kwil, Oleksandra Liudvytska, Beata Marciniak, Jaromir Michałowicz, Dariusz Pietraszewski, Aleksandra Rodacka, Paulina Sicińska | |
Strona przedmiotu: | http://www.biol.uni.lodz.pl/pl | |
Lista studentów: | (nie masz dostępu) | |
Zaliczenie: |
Przedmiot -
Ocena zgodna z regulaminem studiów
Ćwiczenia laboratoryjne - Ocena zgodna z regulaminem studiów |
|
Metody dydaktyczne: | - podające – prezentacja multimedialna, - praktyczne – obserwacja mikroskopowa, wykonywanie preparatów, praca w grupach - poszukujące – ćwiczenia przedmiotowe, doświadczenia, obserwacje i pomiary, praca z wynikami - eksponujące – pokaz |
|
Sposoby i kryteria oceniania: | Warunkiem zaliczenia ćwiczeń jest obecność na zajęciach, zaangażowanie studenta na ćwiczeniach laboratoryjnych, wykazanie się umiejętnościami praktycznymi oraz pozytywne wyniki ze sprawozdań i/lub kolokwium. Ocena końcowa jest średnią ocen wystawionych przez osoby prowadzące poszczególne zajęcia. Szczegóły zaliczenia ćwiczeń realizowanych w poszczególnych Instytutach ustalają prowadzący. Kryteria oceniania: 0% - 59,9% - ocena niedostateczna (2) 60,0% - 69,9% - ocena dostateczna (3) 70,0% - 74,9% - ocena dostateczna plus (3,5) 75,0% - 84,9% - ocena dobra (4) 85,0% - 89,9% - ocena dobra plus (4,5) 90,0% - 100% - ocena bardzo dobra (5) |
|
Treści kształcenia: | BLOK 1 Instytut Ekologii i Ochrony Środowiska: -Ekologia i charakterystyka wybranych gatunków kręgowców oraz ich siedlisk jako poszlak w procesach dochodzeniowo-śledczych -Ślady kręgowców jako poszlaki w procesach dochodzeniowo-śledczych -Identyfikacja zoologicznych dowodów na miejscach przestępstw -Różnorodność bezkręgowców w różnych typach siedlisk ze szczególnym uwzględnieniem bezkręgowców nekrofagicznych -Główne grupy owadów istotnych z punktu widzenia entomologii sądowej -Metody molekularne w badaniach ekotoksykologicznych -Metody zbioru i konserwacji materiału entomologicznego dla potrzeb entomologii sądowej -Analiza zawartości metali ciężkich w próbach biologicznych Instytut Biochemii: -Mechanizmy indukujące proces krzepnięcia w warunkach fizjologicznych i w przypadku ofiar otruć/zatruć ksenobiotykami, w tym lekami i etanolem. -Alkohol etylowy jako ślad w kryminalistycznym materiale biologicznym - metabolizm i metabolity etanolu. -Główne markery zaburzeń czynności układu krzepnięcia krwi (w tym czasu protrobninowego i czasu kaolinowo-kefalinowego) na skutek zatruć ksenobiotykami. - Ślina jako jeden z podstawowych mikrośladów w kryminalistyce - wytrącanie mucyny w celu identyfikacji śliny jako śladu biologicznego na miejscu przestępstwa. - Wykrywanie jonów tiocyjanianowych (rodankowych) w ślinie w celu identyfikacji osób palących. - Oznaczanie aktywności α-amylazy jako markera uszkodzeń wątroby i trzustki na skutek m.in. nadużywania leków wiążących wapń czy zatruć metanolem. Instytut Biofizyki: - Zatrucia metalami ciężkimi i ich identyfikacja. Odtrutki. Wykrywanie ilościowe różnych form żelaza. Rola wartościowości metali w ich toksyczności. - Związki utleniające hemoglobinę. Nitrozo i aminozwiązki. Odtrutki. Rodzaje hemoglobiny methemoglobina, cyjan-Met, nitrozo-hemoglobina. - Ocena neurotoksyczności związków. - Oznaczanie aktywności erytrocytarnej esterazy acetylocholinowej, oraz butyrylocholinoesterazy osoczowej jako wskaźnika zatrucia insektycydami fosforoorganicznymi. Odtrutki. - Gazy duszące fizycznie, chemicznie i drażniące – mechanizm działania gazów toksycznych. - Ocena zatruć tlenkiem węgla jako gazu duszącego chemicznie – oznaczanie poziomu karboksyhemoglobiny (HbCO). - Detekcja promieniowania jonizującego. Metody dozymetrii promieniowania jonizującego. - Zatrucia radionuklidami. - Objawy choroby popromiennej po narażeniu na promieniowanie jonizujące. Instytut Mikrobiologii, Biotechnologii i Immunologii: - Izolacja drobnoustrojów z różnych środowisk w pobliżu miejsca zdarzenia jako źródło informacji. - Naturalna mikrobiota wody, skażenie fekalne. - Mikrobiologiczne wskaźniki jakości wody. - Mikrobiologiczne skażenie żywności. - Woda i żywność jako źródła zatruć i infekcji pokarmowych. - Charakterystyczna mikrobiota gleby – ocena bioróżnorodności. - Powietrze jako ośrodek przenoszenia się drobnoustrojów i celowego rozprzestrzeniania patogenów. Instytut Biologii Eksperymentalnej: - Metody izolacji DNA i/lub RNA z materiału biologicznego; - Analiza polimorfizmu długości fragmentów restrykcyjnych w identyfikacji tożsamości; - Amplifikacja DNA w badaniu mikrośladów biologicznych. - Hodowle komórkowe (komórki prawidłowe oraz komórki linii nowotworowych) - Analiza cytotoksyczności substancji chemicznych na modelu komórkowym in vitro BLOK 2 Instytut Ekologii i Ochrony Środowiska: -Glony współczesne i kopalne jako potencjalny ślad biologiczny -Struktury i zarodniki grzybów – źródło dowodów w dochodzeniach kryminalnych. - Identyfikacja gatunków trujących - zajęcia w Ogrodzie Dydaktyczno-Doświadczalnym Wydziału BIOŚ UŁ - Diagnostyka śladów biologicznych z wykorzystaniem DNA barcoding i mikroskopii skaningowej (DNA barcoding jako metoda wspomagająca badania entomologii sądowej, zastosowanie mikroskopii skaningowej (SEM) i rentgenowskiej spektroskopii energodyspersyjnej (SEM-EDS) w kryminalistyce) - Podstawy preparatyki odontologicznej Instytut Biochemii: - Rola enzymów w diagnostyce urazów i zatruć różnego typu toksynami. - Dehydrogenaza mleczanowa jako marker cytotoksyczności i uszkodzeń komórek oraz tkanek – oznaczenia aktywności. - Fibrynogen jako białko ostrej fazy i jeden z markerów ryzyka zakrzepicy indukowanej różnymi związkami pochodzenia naturalnego i syntetycznego. - Oznaczenie stężenia fibrynogenu w osoczu metodą Claussa z wykorzystaniem metodyki diagnostycznej w celu identyfikacji skutków potencjalnego zatrucia/otrucia. Instytut Biofizyki: - Aktywność systemu antyoksydacyjnego: aktywność katalazy i oznaczanie poziomu glutationu zredukowanego. - Wykorzystanie metod fizycznych w kryminalistyce (Elektronowy Rezonans Paramagnetyczny (EPR), spektrofotometria UV-Vis, spektrofluorymetria, mikroskopia fluorescencyjna) zastosowania jakościowe i ilościowe. -Aktywność dehydrogenazy mleczanowej, jako wskaźnika uszkodzenia wątroby i serca związkami toksycznymi. - Aktywność dehydrogenazy alkoholowej jako markera zatruć alkoholem. - Zatrucia izotopami promieniotwórczymi. Dozymetria promieniowania jonizującego. Instytut Mikrobiologii, Biotechnologii i Immunologii: - Mikrobiota człowieka jako dowód tożsamości. - Mikrobiologiczny odcisk palca. - Drobnoustroje jamy ustnej, projekcja dynamiczna. - Człowiek jako potencjalne źródło skażenia próbki badanej. § - Drobnoustroje patogenne jako broń biologiczna. - Patogeny w określeniu sprawcy/ofiary. - Czynniki chorobotwórczości (proteoliza, hemoliza, ureoliza), sposoby transmisji patogenów, zagrożenie epidemiczne. Instytut Biologii Eksperymentalnej: - Wybrane narzędzia informatyczne w analizie informacji genetycznej; - Enzymy restrykcyjne w analizie materiału biologicznego; - Mapowanie PCR-RFLP w różnicowaniu osobniczym. - Prowadzenie hodowli komórkowych zawiesinowych i adherentnych - Analiza przeżywalności komórek poddanych działaniu związków toksycznych – metody mikroskopowe i spektrofotometryczne |
|
Literatura: |
- Hames, N.M., Houghton Krótkie wykłady – biochemia, PWN, Warszawa 2007 - Stryer L. „Biochemia”, PWN 2003 - Kłyszejko-Stefanowicz L. „Ćwiczenia z biochemii”, PWN 2003 - Ćwiczenia z biochemii. red. Kłyszejko-Stefanowicz L. 1999 i późniejsze. - Golański J., Raszeja-Specht A. Diagnostyka laboratoryjna zaburzeń hemostazy. Repetytorium. MedPharm Polska, 2013 - Zakrzepy i zatory. red. Windyga J., Pasierski T., Torbicki A., wydanie 1, PZWL, 2014 - Stace 1994. Taksonomia roślin i biosystematyka. PWN, Warszawa. - Mildenhall D.C., Wiltshire P.E.J., Bryant V.M. 2006. Forensic palynology: Why do it and how it works. Forensic Science International 163: 163–172. - Miller Coyle H. 2005. Forensic botany. Principles and applications to criminal casework. CRC Press LLC, Boca Raton, London, New York, Washington D.C. - Hillson S. 2005. Teeth. Cambridge University Press - Gumińska B., Wojewoda W. 1998. Grzyby i ich oznaczanie. PWRiL, Warszawa, 505 pp. - Łuszczyński J. 2006. Przewodnik do ćwiczeń z mikologii. Wyd. Akademii Świętokrzyskiej, Kielce. - Hawksworth, D. & Wiltshire, P.E.J. 2015. Forensic mycology : current perspective. Research and Reports in Forensic Medical Science 5: 75-83. - Sawicki W. Histologia, PZWL, 2019 - Analiza DNA. Teoria i Praktyka, Ryszard Słomski, Wydawnictwo Uniwersytetu Przyrodniczego w Poznaniu, 2011 - Korf B.R. Genetyka człowieka, PWN, Warszawa 2003 - Węgleński P. (red.). Genetyka molekularna, PWN, Warszawa 2006 - T.A. Brown, Genomy, PWN, Warszawa 2019 - Manahan S.E. Toxicological Chemistry and Biochemistry. 3. edycja, przekład w języku polskim Koroniak i Boczoń pt. Toksykologia środowiskowa, PWN, Warszawa 2006. -A.A. Salyers, D.D. Whitt „Mikrobiologia. Różnorodność, chorobotwórczość i środowisko” K. Chomiczewski, J. Kocik, T. Szkoda „ Bioterroryzm” PZWL Wydawnictwo lekarskie - Siemiński M. Środowiskowe zagrożenia zdrowia. PWN, Warszawa 2001. - Toksykologia współczesna pod red. Prof. W. Seńczuk - Podstawy toksykologii pod red. Prof. J.K. Piotrowskiego - Bukowska B., Pieniążek D., Hutnik K., Duda W., [2007]. Acetylo- i butyrylocholinoesteraza – budowa, funkcje i ich inhibitory. Current Topics in Biophysics 30, 11–23 - Pingot D., Pyrzanowski K., Michałowicz J., Bukowska B., [2013]. Toksyczność akrylamidu i jego metabolitu glicydamidu. Medycyna Pracy 64(2):259–271 - Pyrzanowski K., Pringot D., Michałowicz J., Bukowska B., [2013]. Charakterystyka metod biologicznych, chemicznych i fizycznych ograniczających obecność akrylamidu w żywności. Bromatologia i chemia toksykologiaczna XLVI, 2013, 2, str. 216 – 224 - Bukowska, B., Addukty hemoglobiny jako biomarkery narażenia człowieka na wybrane ksenobiotyki. Postepy Hig Med Dosw (online), 2015; 69: 668-680. - Jarosiewicz, M., Bukowska B., [2017]. Tetrabromobisfenol A – toksyczność, narażenie środowiskowe i zawodowe Med Pr 2017;68(1):121–134 |
Zajęcia w cyklu "Semestr letni 2023/2024" (zakończony)
Okres: | 2024-02-26 - 2024-09-30 |
Przejdź do planu
PN CLE
CLE
CLE
CLE
CLE
CLE
CLE
CLE
CLE
CLE
WT CLE
CLE
CLE
CLE
CLE
CLE
CLE
CLE
CLE
CLE
CLE
CLE
CLE
CLE
ŚR CLE
CLE
CLE
CLE
CLE
CLE
CLE
CLE
CZ CLE
CLE
CLE
CLE
CLE
CLE
CLE
CLE
PT CLE
CLE
CLE
|
Typ zajęć: |
Ćwiczenia laboratoryjne, 52 godzin
|
|
Koordynatorzy: | Beata Marciniak | |
Prowadzący grup: | Katarzyna Hnatuszko-Konka, Radomir Jaskuła, Mateusz Kciuk, Iwona Kwil, Karina Maciak, Beata Marciniak, Marcin Markowski, Marek Michalski, Jaromir Michałowicz, Agata Palusiak, Dariusz Pietraszewski, Aleksandra Rodacka, Paulina Sicińska, Małgorzata Siwińska, Dominika Szczerbiec, Paulina Wigner-Jeziorska, Agnieszka Zabłotni | |
Strona przedmiotu: | http://www.biol.uni.lodz.pl/pl | |
Lista studentów: | (nie masz dostępu) | |
Zaliczenie: |
Przedmiot -
Ocena zgodna z regulaminem studiów
Ćwiczenia laboratoryjne - Ocena zgodna z regulaminem studiów |
|
Metody dydaktyczne: | - podające – prezentacja multimedialna, - praktyczne – obserwacja mikroskopowa, wykonywanie preparatów, praca w grupach - poszukujące – ćwiczenia przedmiotowe, doświadczenia, obserwacje i pomiary, praca z wynikami - eksponujące – pokaz |
|
Sposoby i kryteria oceniania: | Warunkiem zaliczenia ćwiczeń jest obecność na zajęciach, zaangażowanie studenta na ćwiczeniach laboratoryjnych, wykazanie się umiejętnościami praktycznymi oraz pozytywne wyniki ze sprawozdań i kolokwium końcowego. Ocena końcowa jest średnią ocen wystawionych przez osoby prowadzące poszczególne zajęcia. Szczegóły zaliczenia ćwiczeń realizowanych w poszczególnych Instytutach ustalają prowadzący. Kryteria oceniania: 0% - 59,9% - ocena niedostateczna (2) 60,0% - 69,9% - ocena dostateczna (3) 70,0% - 74,9% - ocena dostateczna plus (3,5) 75,0% - 84,9% - ocena dobra (4) 85,0% - 89,9% - ocena dobra plus (4,5) 90,0% - 100% - ocena bardzo dobra (5) |
|
Treści kształcenia: | 1) Zajęcia realizowane w Instytucie Biochemii: Badania kluczowych parametrów układu hemostazy w ocenie ryzyka zakrzepicy po intoksykacji. Zaburzenia układu hemostazy. Rodzaje toksyn, substancje chemicznych oraz leków wpływających na formowanie się czopu chemostatycznego. Oznaczanie aktywności wybranych czasów krzepnięcia krwi za pomocą koagulometru. Oznaczanie stężenia fibrynogenu w osoczu metodą Claussa z wykorzystaniem metodyki diagnostycznej. Oznaczenia wybranych markerów enzymatycznych w płynach ustrojowych. Oznaczenie aktywności β-N-acetyloglukozaminidazy (β-NAG) jako markera ostrego uszkodzenia nerek, procesów zapalnych i nadużywania alkoholu. Oznaczanie poziomu dehydrogenazy mleczanowej (LDH) w osoczu z wykorzystaniem metody Wróblewskiego. Wybrane analizy biochemiczne płynów ustrojowych. 2) Zajęcia realizowane w Instytucie Biofizyki: Zapoznanie studentów z identyfikacją metali ciężkich i ich toksycznością oraz stosowanymi odtrutkami. Wykrywanie ilościowe różnych form żelaza. Przedstawienie roli wartościowości metali w ich toksyczności. Omówienie związków utleniających hemoglobinę głównie nitrozo i aminozwiązków. Doświadczalna ocena rodzajów hemoglobiny: oksyhemoglobina, deoksyhemoglobina, methemoglobina. Zapoznanie studentów z metodami oceny neurotoksyczności związków. Oznaczanie aktywności erytrocytarnej esterazy acetylocholinowej, oraz butyrylocholinoesterazy osoczowej jako wskaźnika zatrucia insektycydami fosforoorganicznymi. Omówienie stosowanych odtrutek w przypadku zatruć związkami fosforoorganicznymi. Charakterystyka gazów duszących fizycznie, chemicznie i drażniące – mechanizm działania gazów toksycznych. Ocena zatruć tlenkiem węgla jako gazu duszącego chemicznie – oznaczanie poziomu karboksyhemoglobiny (HbCO). Detekcja promieniowania jonizującego. Metody dozymetrii promieniowania jonizującego. Zatrucia radionuklidami. Objawy choroby popromiennej po narażeniu na promieniowanie jonizujące. 3) Zajęcia realizowane w Instytucie Mikrobiologii, Biotechnologii i Immunologii: Mikrobiota człowieka jako dowód tożsamości. „Mikrobiologiczny odcisk palca”. Drobnoustroje jamy ustnej, projekcja dynamiczna. Człowiek jako potencjalne źródło skażenia próbki badanej. Drobnoustroje patogenne jako broń biologiczna. Patogeny w określeniu sprawcy/ofiary. Czynniki chorobotwórczości (proteoliza, hemoliza, ureoliza), sposoby transmisji patogenów, zagrożenie epidemiczne. 4) Zajęcia realizowane w Instytucie Ekologii i Ochrony Środowiska: Nauka przygotowania preparatu w zależności od typu analizowanego materiału. Podstawowa preparatyka mykologiczna, odontologiczna. Struktury i zarodniki grzybów ważne dla dowodów w dochodzeniach kryminalnych. Mykologia kryminalna - możliwości i perspektywy. Analiza mikroskopowa struktury szkliwa i możliwości jej wykorzystanie w dochodzeniach medyczno-sądowych. Poznanie praktycznej analizy identyfikacji szczątków roślinnych z użyciem skaningowego mikroskopu elektronowego (SEM). Wstęp do analizy karpologicznej na podstawie zdjęć SEM. 5) Zajęcia realizowane w Instytucie Biologii eksperymentalnej: „Nowoczesne techniki histologiczne i inżynieria genetyczna w kryminalistyce”: Charakterystyka podstawowych narzędzi i technik współczesnej inżynierii genetycznej: enzymy restrykcyjne jako narzędzie pozwalające na manipulowanie cząsteczkami DNA (klonowanie molekularne), wybrane narzędzia on-line pomocne w klonowaniu molekularnym (m.in. tworzenie map wektorów, zestawianie reakcji ligacji, zestawianie reakcji PCR). Metody izolacji materiału genetycznego z różnych źródeł (charakterystyka i porównanie). Nowoczesne techniki histologiczne w kryminalistyce – zajęcia praktyczne w Pracowni Obrazowania Mikroskopowego i Specjalistycznych Technik Biologicznych. Hodowla komórkowa in vitro. Metody badania cytotoksyczności substancji chemicznych. |
|
Literatura: |
- Hames, N.M., Houghton Krótkie wykłady – biochemia, PWN, Warszawa 2007 - Stryer L. „Biochemia”, PWN 2003 - Kłyszejko-Stefanowicz L. „Ćwiczenia z biochemii”, PWN 2003 - Ćwiczenia z biochemii. red. Kłyszejko-Stefanowicz L. 1999 i późniejsze. - Golański J., Raszeja-Specht A. Diagnostyka laboratoryjna zaburzeń hemostazy. Repetytorium. MedPharm Polska, 2013 - Zakrzepy i zatory. red. Windyga J., Pasierski T., Torbicki A., wydanie 1, PZWL, 2014 - Stace 1994. Taksonomia roślin i biosystematyka. PWN, Warszawa. - Mildenhall D.C., Wiltshire P.E.J., Bryant V.M. 2006. Forensic palynology: Why do it and how it works. Forensic Science International 163: 163–172. - Miller Coyle H. 2005. Forensic botany. Principles and applications to criminal casework. CRC Press LLC, Boca Raton, London, New York, Washington D.C. - Hillson S. 2005. Teeth. Cambridge University Press - Gumińska B., Wojewoda W. 1998. Grzyby i ich oznaczanie. PWRiL, Warszawa, 505 pp. - Łuszczyński J. 2006. Przewodnik do ćwiczeń z mikologii. Wyd. Akademii Świętokrzyskiej, Kielce. - Hawksworth, D. & Wiltshire, P.E.J. 2015. Forensic mycology : current perspective. Research and Reports in Forensic Medical Science 5: 75-83. - Sawicki W. Histologia, PZWL, 2019 - Analiza DNA. Teoria i Praktyka, Ryszard Słomski, Wydawnictwo Uniwersytetu Przyrodniczego w Poznaniu, 2011 - Korf B.R. Genetyka człowieka, PWN, Warszawa 2003 - Węgleński P. (red.). Genetyka molekularna, PWN, Warszawa 2006 - T.A. Brown, Genomy, PWN, Warszawa 2019 - Manahan S.E. Toxicological Chemistry and Biochemistry. 3. edycja, przekład w języku polskim Koroniak i Boczoń pt. Toksykologia środowiskowa, PWN, Warszawa 2006. -A.A. Salyers, D.D. Whitt „Mikrobiologia. Różnorodność, chorobotwórczość i środowisko” K. Chomiczewski, J. Kocik, T. Szkoda „ Bioterroryzm” PZWL Wydawnictwo lekarskie - Siemiński M. Środowiskowe zagrożenia zdrowia. PWN, Warszawa 2001. - Toksykologia współczesna pod red. Prof. W. Seńczuk - Podstawy toksykologii pod red. Prof. J.K. Piotrowskiego - Bukowska B., Pieniążek D., Hutnik K., Duda W., [2007]. Acetylo- i butyrylocholinoesteraza – budowa, funkcje i ich inhibitory. Current Topics in Biophysics 30, 11–23 - Pingot D., Pyrzanowski K., Michałowicz J., Bukowska B., [2013]. Toksyczność akrylamidu i jego metabolitu glicydamidu. Medycyna Pracy 64(2):259–271 - Pyrzanowski K., Pringot D., Michałowicz J., Bukowska B., [2013]. Charakterystyka metod biologicznych, chemicznych i fizycznych ograniczających obecność akrylamidu w żywności. Bromatologia i chemia toksykologiaczna XLVI, 2013, 2, str. 216 – 224 - Bukowska, B., Addukty hemoglobiny jako biomarkery narażenia człowieka na wybrane ksenobiotyki. Postepy Hig Med Dosw (online), 2015; 69: 668-680. - Jarosiewicz, M., Bukowska B., [2017]. Tetrabromobisfenol A – toksyczność, narażenie środowiskowe i zawodowe Med Pr 2017;68(1):121–134 |
Zajęcia w cyklu "Semestr letni 2022/2023" (zakończony)
Okres: | 2023-02-20 - 2023-09-30 |
Przejdź do planu
PN CLE
CLE
CLE
CLE
CLE
WT CLE
CLE
CLE
CLE
CLE
CLE
CLE
CLE
CLE
CLE
CLE
CLE
CLE
CLE
CLE
CLE
CLE
CLE
CLE
CLE
CLE
ŚR CLE
CLE
CLE
CLE
CLE
CLE
CZ CLE
CLE
CLE
CLE
CLE
CLE
PT CLE
CLE
|
Typ zajęć: |
Ćwiczenia laboratoryjne, 52 godzin
|
|
Koordynatorzy: | Marek Wieczorek | |
Prowadzący grup: | Piotr Gadawski, Katarzyna Hnatuszko-Konka, Piotr Jóźwiak, Izabela Kałucka, Marta Kurek, Iwona Kwil, Oleksandra Liudvytska, Jaromir Michałowicz, Magdalena Moryl, Agata Palusiak, Aleksandra Rodacka, Paulina Sicińska, Małgorzata Siwińska, Paulina Stolarek, Marek Wieczorek, Paulina Wigner-Jeziorska | |
Lista studentów: | (nie masz dostępu) | |
Zaliczenie: |
Przedmiot -
Ocena zgodna z regulaminem studiów
Ćwiczenia laboratoryjne - Ocena zgodna z regulaminem studiów |
|
Czy ECTS?: | T |
Zajęcia w cyklu "Semestr letni 2021/2022" (zakończony)
Okres: | 2022-02-21 - 2022-09-30 |
Przejdź do planu
PN WT ŚR CZ PT |
Typ zajęć: |
Ćwiczenia laboratoryjne, 52 godzin
|
|
Koordynatorzy: | Angela Dziedzic | |
Prowadzący grup: | Bożena Bukowska, Angela Dziedzic, Piotr Gadawski, Katarzyna Hnatuszko-Konka, Izabela Kałucka, Marta Kurek, Iwona Kwil, Jaromir Michałowicz, Agata Palusiak, Agnieszka Rewicz, Aleksandra Rodacka, Agata Rolnik, Paulina Sicińska, Małgorzata Siwińska, Paulina Stolarek, Marek Wieczorek, Paulina Wigner-Jeziorska | |
Strona przedmiotu: | http://www.biol.uni.lodz.pl/pl | |
Lista studentów: | (nie masz dostępu) | |
Zaliczenie: |
Przedmiot -
Ocena zgodna z regulaminem studiów
Ćwiczenia laboratoryjne - Ocena zgodna z regulaminem studiów |
|
Czy ECTS?: | T |
|
Metody dydaktyczne: | - podające – prezentacja multimedialna, - praktyczne – obserwacja mikroskopowa, wykonywanie preparatów, praca w grupach - poszukujące – ćwiczenia przedmiotowe, doświadczenia, obserwacje i pomiary, praca z wynikami - eksponujące – pokaz |
|
Sposoby i kryteria oceniania: | Warunkiem zaliczenia ćwiczeń jest obecność na zajęciach, zaangażowanie studenta na ćwiczeniach laboratoryjnych, wykazanie się umiejętnościami praktycznymi oraz pozytywne wyniki ze sprawozdań i kolokwium końcowego. Ocena końcowa jest średnią ocen wystawionych przez osoby prowadzące poszczególne zajęcia. Kryteria oceniania: 0% - 59,9% - ocena niedostateczna (2) 60,0% - 69,9% - ocena dostateczna (3) 70,0% - 74,9% - ocena dostateczna plus (3,5) 75,0% - 84,9% - ocena dobra (4) 85,0% - 89,9% - ocena dobra plus (4,5) 90,0% - 100% - ocena bardzo dobra (5) |
|
Treści kształcenia: | 1) Zajęcia realizowane w Instytucie Biochemii: Badania kluczowych parametrów układu hemostazy w ocenie ryzyka zakrzepicy po intoksykacji. Zaburzenia układu hemostazy. Rodzaje toksyn, substancje chemicznych oraz leków wpływających na formowanie się czopu chemostatycznego. Oznaczanie aktywności wybranych czasów krzepnięcia krwi za pomocą koagulometru. Oznaczanie stężenia fibrynogenu w osoczu metodą Claussa z wykorzystaniem metodyki diagnostycznej. Oznaczenia wybranych markerów enzymatycznych w płynach ustrojowych. Oznaczenie aktywności β-N-acetyloglukozaminidazy (β-NAG) jako markera ostrego uszkodzenia nerek, procesów zapalnych i nadużywania alkoholu. Oznaczanie poziomu dehydrogenazy mleczanowej (LDH) w osoczu z wykorzystaniem metody Wróblewskiego. Analiza przeżywalności komórek przy użyciu techniki z błękitem trypanu, podstawy obsługi licznika komórek. 2) Zajęcia realizowane w Instytucie Biofizyki: Zapoznanie studentów z identyfikacją metali ciężkich i ich toksycznością oraz stosowanymi odtrutkami. Wykrywanie ilościowe różnych form żelaza. Przedstawienie roli wartościowości metali w ich toksyczności. Omówienie związków utleniających hemoglobinę głównie nitrozo i aminozwiązków. Doświadczalna ocena rodzajów hemoglobiny: oksyhemoglobina, deoksyhemoglobina, methemoglobina. Zapoznanie studentów z metodami oceny neurotoksyczności związków. Oznaczanie aktywności erytrocytarnej esterazy acetylocholinowej, oraz butyrylocholinoesterazy osoczowej jako wskaźnika zatrucia insektycydami fosforoorganicznymi. Omówienie stosowanych odtrutek w przyadku zatruć związkami fosforoorganicznymi. Charakterystyka gazów duszących fizycznie, chemicznie i drażniące – mechanizm działania gazów toksycznych. Ocena zatruć tlenkiem węgla jako gazu duszącego chemicznie – oznaczanie poziomu karboksyhemoglobiny (HbCO). Detekcja promieniowania jonizującego. Metody dozymetrii promieniowania jonizującego. Zatrucia radionuklidami. Objawy choroby popromiennej po narażeniu na promieniowanie jonizujące. 3) Zajęcia realizowane w Instytucie Mikrobiologii, Biotechnologii i Immunologii: Mikrobiota człowieka jako dowód tożsamości. „Mikrobiologiczny odcisk palca”. Drobnoustroje jamy ustnej, projekcja dynamiczna. Człowiek jako potencjalne źródło skażenia próbki badanej. Drobnoustroje patogenne jako broń biologiczna. Patogeny w określeniu sprawcy/ofiary. Czynniki chorobotwórczości (proteoliza, hemoliza, ureoliza), sposoby transmisji patogenów, zagrożenie epidemiczne. 4) Zajęcia realizowane w Instytucie Ekologii i Ochrony Środowiska: Nauka przygotowania preparatu w zależności od typu analizowanego materiału. Podstawowa preparatyka mykologiczna, odontologiczna. Struktury i zarodniki grzybów ważne dla dowodów w dochodzeniach kryminalnych. Mykologia kryminalna - możliwości i perspektywy. Analiza mikroskopowa struktury szkliwa i możliwości jej wykorzystanie w dochodzeniach medyczno-sądowych. Poznanie praktycznej analizy identyfikacji szczątków roślinnych z użyciem skaningowego mikroskopu elektronowego (SEM). Wstęp do analizy karpologicznej na podstawie zdjęć SEM. 5) Zajęcia realizowane w Instytucie Biologii eksperymentalnej: „Nowoczesne techniki histologiczne i inżynieria genetyczna w kryminalistyce”: Charakterystyka podstawowych narzędzi i technik współczesnej inżynierii genetycznej: enzymy restrykcyjne jako narzędzie pozwalające na manipulowanie cząsteczkami DNA (klonowanie molekularne), wybrane narzędzia on-line pomocne w klonowaniu molekularnym (m.in. tworzenie map wektorów, zestawianie reakcji ligacji, zestawianie reakcji PCR). Metody izolacji materiału genetycznego z różnych źródeł (charakterystyka i porównanie). Nowoczesne techniki histologiczne w kryminalistyce – zajęcia praktyczne w Pracowni Obrazowania Mikroskopowego i Specjalistycznych Technik Biologicznych. |
|
Literatura: |
- Hames, N.M., Houghton Krótkie wykłady – biochemia, PWN, Warszawa 2007 - Stryer L. „Biochemia”, PWN 2003 - Kłyszejko-Stefanowicz L. „Ćwiczenia z biochemii”, PWN 2003 - Ćwiczenia z biochemii. red. Kłyszejko-Stefanowicz L. 1999 i późniejsze. - Golański J., Raszeja-Specht A. Diagnostyka laboratoryjna zaburzeń hemostazy. Repetytorium. MedPharm Polska, 2013 - Zakrzepy i zatory. red. Windyga J., Pasierski T., Torbicki A., wydanie 1, PZWL, 2014 - Stace 1994. Taksonomia roślin i biosystematyka. PWN, Warszawa. - Mildenhall D.C., Wiltshire P.E.J., Bryant V.M. 2006. Forensic palynology: Why do it and how it works. Forensic Science International 163: 163–172. - Miller Coyle H. 2005. Forensic botany. Principles and applications to criminal casework. CRC Press LLC, Boca Raton, London, New York, Washington D.C. - Hillson S. 2005. Teeth. Cambridge University Press - Gumińska B., Wojewoda W. 1998. Grzyby i ich oznaczanie. PWRiL, Warszawa, 505 pp. - Łuszczyński J. 2006. Przewodnik do ćwiczeń z mikologii. Wyd. Akademii Świętokrzyskiej, Kielce. - Hawksworth, D. & Wiltshire, P.E.J. 2015. Forensic mycology : current perspective. Research and Reports in Forensic Medical Science 5: 75-83. - Sawicki W. Histologia, PZWL, 2019 - Analiza DNA. Teoria i Praktyka, Ryszard Słomski, Wydawnictwo Uniwersytetu Przyrodniczego w Poznaniu, 2011 - Korf B.R. Genetyka człowieka, PWN, Warszawa 2003 - Węgleński P. (red.). Genetyka molekularna, PWN, Warszawa 2006 - T.A. Brown, Genomy, PWN, Warszawa 2019 - Manahan S.E. Toxicological Chemistry and Biochemistry. 3. edycja, przekład w języku polskim Koroniak i Boczoń pt. Toksykologia środowiskowa, PWN, Warszawa 2006. -A.A. Salyers, D.D. Whitt „Mikrobiologia. Różnorodność, chorobotwórczość i środowisko” K. Chomiczewski, J. Kocik, T. Szkoda „ Bioterroryzm” PZWL Wydawnictwo lekarskie - Siemiński M. Środowiskowe zagrożenia zdrowia. PWN, Warszawa 2001. - Toksykologia współczesna pod red. Prof. W. Seńczuk - Podstawy toksykologii pod red. Prof. J.K. Piotrowskiego - Bukowska B., Pieniążek D., Hutnik K., Duda W., [2007]. Acetylo- i butyrylocholinoesteraza – budowa, funkcje i ich inhibitory. Current Topics in Biophysics 30, 11–23 - Pingot D., Pyrzanowski K., Michałowicz J., Bukowska B., [2013]. Toksyczność akrylamidu i jego metabolitu glicydamidu. Medycyna Pracy 64(2):259–271 - Pyrzanowski K., Pringot D., Michałowicz J., Bukowska B., [2013]. Charakterystyka metod biologicznych, chemicznych i fizycznych ograniczających obecność akrylamidu w żywności. Bromatologia i chemia toksykologiaczna XLVI, 2013, 2, str. 216 – 224 - Bukowska, B., Addukty hemoglobiny jako biomarkery narażenia człowieka na wybrane ksenobiotyki. Postepy Hig Med Dosw (online), 2015; 69: 668-680. - Jarosiewicz, M., Bukowska B., [2017]. Tetrabromobisfenol A – toksyczność, narażenie środowiskowe i zawodowe Med Pr 2017;68(1):121–134 |
Właścicielem praw autorskich jest UNIWERSYTET ŁÓDZKI.